一、細胞模型構建與質量控制

　　試劑盒內含經α-平滑肌肌動蛋白（α-SMA）免疫熒光染色驗證的純度≥90%的原代人胃平滑肌細胞，且通過PCR檢測排除HIV-1、HBV、HCV及支原體污染。細胞培養采用含15%FBS的DMEM培養基，37℃、5%CO?條件下傳代，每2-3天換液，傳代比例1:2，確保細胞活性＞95%。實驗前需通過倒置顯微鏡觀察細胞形態（長梭狀貼壁生長），排除成纖維細胞等雜質干擾。

　　二、藥物篩選平臺搭建

　　離體收縮功能檢測：利用細胞收縮力測定系統，將細胞接種于硅膠膜培養皿，施加電場刺激誘導收縮，通過傳感器記錄收縮幅度與頻率。例如，在糖尿病胃輕癱藥物篩選中，可檢測藥物對乙酰膽堿誘導收縮的抑制率，篩選出能恢復胃排空動力的候選化合物。

　　高通量篩選：結合96孔板培養與自動化成像系統，通過鈣離子熒光探針（如Fluo-4AM）實時監測藥物對細胞內Ca²?濃度的影響，評估藥物對平滑肌收縮信號通路的調控作用。

　　三、分子機制研究策略

　　AMPK通路研究：針對糖尿病胃輕癱，利用試劑盒中的細胞構建AMPK磷酸化檢測模型。通過Westernblot分析藥物處理后AMPKα亞基Thr172位點磷酸化水平，結合ATP檢測試劑盒測定細胞能量代謝狀態，揭示藥物通過激活AMPK改善細胞凋亡與能量代謝的機制。

　　基因編輯驗證：利用CRISPR-Cas9技術敲除試劑盒細胞中的LKB1或CaMKKβ基因，觀察藥物對AMPK激活的依賴性，明確上游激酶在藥物作用中的關鍵角色。

　　四、疾病模型與藥物評價

　　胃輕癱模型：模擬高血糖環境（25mM葡萄糖）培養細胞，檢測藥物對高糖誘導的細胞凋亡（TUNEL染色）及收縮功能障礙（收縮力下降）的改善效果。

　　胃痙攣模型：通過卡巴膽堿誘導細胞過度收縮，篩選能降低收縮幅度的解痙藥物，并結合鈣成像技術分析藥物對Ca²?內流的抑制作用。

　　五、技術優勢與數據整合

　　試劑盒細胞來源于健康人胃組織，保留了原代細胞的生理特性，避免了細胞系因長期傳代導致的基因漂變。實驗數據可結合生物信息學工具（如IPA軟件）進行通路富集分析，構建藥物-靶點-通路-表型的關聯網絡，為藥物優化提供多維度依據。例如，在某抗胃輕癱藥物研發中，通過該方案發現藥物通過激活AMPK-mTOR通路抑制細胞凋亡，最終將候選化合物推進至臨床前研究階段。